Plantas

GRUPO: LOS PROTECTORES

DEFINICIÓN.

Figura 1. Planta parásita.

Son vegetales que, al no poder satisfacer por sí mismas sus demandas nutricionales, obtienen los nutrientes que requieren a expensas de otra planta (Godoy et al. 2002, Marticorena et al. 2010, citado por Pinto 2014). Fuente: Tomado de Marticorena et al. (2010).

Figura 4. Planta parásita muérdago (Viscum album)

Figura 2 y 3 . Planta parásita conocida como matapalo o renaco (Ficus spp.)

CLASIFICACIÓN.

(Heide-Jørgensen 2008) Figura 7. Viscum album

FACULTATIVAS

Fuente: Marchal (2009)

HEMIPARÁSITAS

HOLOPARÁSITAS Figura 8.Cuscata glomerata

OBLIGADAS

PRIMITIVAS

AVANZADAS

Fuente: Lutz

. ) 0 1 0 2 ( .l a t e a n er o c i tr a M e d o d a m o T : e t n e u F

BIOLOGÍA.

Figura 5. Conexión de los haustorios al tejido vascular.

HAUSTORIO: Son raíces adaptadas, convertido en un órgano multifuncional. Funciones: - Fijación. - Penetración. - Transferencia de solutos. - Proporciona continuidad vascular entre hospedador y parásita.

Figura 6. Cuscata sp.

Formas de vida - Hierbas anuales y perennes. - Arbustos - Árboles

Pueden invadir las raíces y las partes aéreas de la planta hospedadora

Ciclo de vida - Germinación (tallos, copas, ramas, raíces) - Brotes epicorticales siguen la forma de ramas - Etapas de desarrollo - Polinización y diseminación

Figura 9. Raíces haustoriales de la planta Cuscuta pentagona.

Ejemplo de especie parásita

Orobanche sp. Es una planta holoparásita

(1-4) La germinación de la semilla es estimulada por estrigolactonas derivadas del hospedador. Las plántulas crecen de manera quimiotrópica, y establecen conexiones celulares con el xilema y el floema del hospedador. (5) El parásito joven continúa desarrollándose bajo tierra hasta que está listo para reproducirse; (6) luego, los brotes florales emergen de la superficie. (7) Cada flor puede producir alrededor de 500 semillas por polinización cruzada, autopolinización y apomixis.

(7)

(5)

(6)

Fuente: Wiseglass (2019)

MÉTODOS PARA INTERRUMPIR EL CICLO DE VIDA DEL SIGNO Gran capacidad de producir altas cantidades de semillas que permanecen viables en el suelo por más de 10 años. Métodos para el control de estas plantas son culturales, mecánicos, físicos, químicos y biológicos.

Manejo de los barbechos • Los arboles actúan como falsos hospedantes • Incremento contenido de N al finalizar. • Estimula germinacion de la P.P • Aumenta la actividad microbiana que afectan la maduración y viabilidad de las semillas de la planta parasita.

Figura 10. Barbecho

Fuente: Tomado de Agritotal

Etileno para inducir germinacion suicida de las semillas en Carolina del Norte para erradicar S. asiática por medio de la inyección de gas debajo de la superficie del suelo usando equipos especiales. El compuesto Nijmegen 1, con el estimulante Strigolactone, son los estimulantes sintéticos de la germinación más potentes, a bajas concentraciones (10-9-10-6 mol/l), para muchas especies de Striga y Orobanche .

Herbicidas

Figura 11. Estructura quimica del etileno

Fitomejoramiento para obtener variedades resistentes Figura 12. Fitomejoramiento

Enfoques biotecnológicos para mejorar resistencia de hospedantes a las malezas parasitas.

Fuente: Tomado de MundoAgropecuario.com

Control biológico Figura 13. Smicronyx spp Figura 14. Ophiomyia strigalis

Insectos y agnetes microbianos para suprimir y erradicar malezas. Ha ganado considerable atencion en los ultimos años Figura 15. Phytomyza orobanchia

Suplemento promisorio

TAXONOMÍA. (Zegarra 2019) Para el Perú: más de 100 especies. 5 familias de parasitarias más representativas en nuestro país: CLASE

ORDEN

FAMILIA

GÉNERO 8 géneros.

SANTALALES

Lorantháceas Santaláceas Balanophoraceas

DICOTILEDÓNEAS

3 géneros (Arjona, Cervantesia, Quinchamalium). 1 género (Helosis).

SOLANALALES

Cuscutáceas

1 género (Cuscuta).

LAMIALES

Orobancáceas

1 género (Orobanche).

BIBLIOGRAFÍA. - Alvarado, D; Saavedra, L. 2017. Memorias del Foro Nacional: las plantas parásitas en México (en línea). Estado de México, México, CONACYT. 52 p. Consultado 1 oct. 2020. Disponible en http://redsaludforestal.com/DBSX/System/biblioteca/6.3%20Memorias%20del%20Foro_kv63wubc.pdf#page=7 . - Heide-Jørgensen, H. 2008. Parasitic flowering plants. Leiden, Holanda, Brill. 438 p. - Marticorena, A; Alarcón, D; Abello, L; Atala, C. 2010. Plantas trepadoras, epífitas y parásitas nativas de Chile. Concepción, Chile, Ed. Corporación Chilena de la Madera. 219 p. - Pinto, J. 2014.Influencia de la estructura del hospedador sobre el éxito del establecimiento de Tristerix corymbosus (en línea). Tesis Lic. Valdivia, Chile, Universidad Austral de Chile. 21 p. Consultado 2 oct. 2020. Recuperado de http://cybertesis.uach.cl/tesis/uach/2014/fifp659i/doc/fifp659i.pdf. - Rodríguez, T. 2014. Estudio ecológico de las plantas parásitas en un matorral xerófilo de la costa de Sonora (en línea). Tesis Lic. Biología. Hermosillo, México, Universidad de Sonora. 65 p. Consultado 3 oct. 2020. Disponible en http://www.repositorioinstitucional.uson.mx/bitstream/handle/unison/2082/rodriguezpachecothelmasofial.pdf?sequence=1&isAllowed=y Wiseglass, Gil & Pri-Tal, Oded & Mosquna, Assaf. (2019). ABA signaling components in Phelipanche aegyptiaca. Scientific Reports. 9. 10.1038/s41598-01942976-3. - Wohlfeiler, J. 2016. Análisis evolutivo y genético de las plantas parásitas del género Lophophytum (en línea). Tesis Lic. Ciencias Básicas. Mendoza, Argentina, Universidad Nacional de Cuyo. 64 p. Consultado 3 oct. 2020. Disponible en https://bdigital.uncu.edu.ar/objetos_digitales/14055/wohlfeilerj-tesina2016.pdf - Zegarra, R. 2019. Plantas parásitas del sur del Perú: estudio biosistemático. Ciencia & Desarrollo (3):45-47. DOI: https://doi.org/10.33326/26176033.1996.3.64.