Histologìa Vegetal

HISTOLOGÌA VEGETAL: TECNICA DE OBTENCIÒN DE CORTES Y TINCION. William Armando Canacuán Cueltan, Claudio Ricardo Quenorán López, Andry Karina Espinoza. Programa de ingeniería agroecológica. Facultad de ingeniería. Universidad de la Amazonia

Objetivos: con esta práctica obtuvimos conocimientos en el estudio de los tipos de células y la organización de tejidos fundamentales, el conocimiento fundamentado del parénquima y de sus partes que la componen además obtuvimos un conocimiento basado en las técnicas de obtención de cortes y tinción con su amplia diversidad entre los colorantes más utilizados puesto que en esta práctica solo utilizamos Lugol.

Materiales: los materiales utilizados para el desarrollo de la práctica fueron: papa, cuchilla minora, microscopio, Lugol, agua destilada, laminillas, laminas, caja de Petri, gotero. Introducción: la práctica se desarrolló mediante la observación en base de un corte muy delgado de la sección de la papa con la intención de identificar el parénquima para ello se utilizó el Lugol como reactivo que se usa para tinción de gran; es útil para observar, dar contraste a estos tejidos. según Bonifaz, T. J. A., Vázquez, G. D., & Araiza, J. (2012). como el parénquima de almacenamiento que es un tejido esponjoso; en el tejido esponjoso se encuentra inmerso los gránulos de almidón que son un polisacárido de reserva energética de los vegetales y se localiza principalmente en cereales, raíces, tubérculos, frutas y semillas según (Whistler y col., 1984). EI parénquima es un tejido simple poco diferenciado que a veces se encuentra asociado con otras células distintas para formar tejidos complejos como la felodermis. Se le localiza en la medula y la mayoría de la corteza de la raíz y del vástago, el periciclo, el mesófilo de las hojas, y las partes carnosas de los frutos. según CarvajalSandoval, A. (2010) Con esta practica quisimos dar respuesta a la importancia de la identificación del parénquima está constituido por células vivas, generalmente bien vacuoladas, fisiológicamente complejas, en general con paredes primarias, poco diferenciadas, capaces de reanudar la actividad meristemática. A esta capacidad deben las plantas la posibilidad de cicatrizar las heridas, regenerar tejidos, y formar nuevos vástagos y raíces adventicias.

Metodología: se realizo un corte transversal muy delgado en la corteza de la papa se hizo el montaje respectivo en las laminillas donde se le aplico entre una y dos gotas de Lugol cabe resaltar que se le aplico agua destilada para rebajar su concentración, para luego ser montadas en el microscopio, y realizar la observación del parénquima, y los gránulos de almidón, se realizó la observación en 4x y 10x.

Resultados: se realizó la observación en 4x, tras haber agregado Lugol a la muestra de papa, se identifico la estructura de este tejido que cuenta con características de tinción tras la labor del Lugol que nos sirve para identificar la presencia de almidón en nuestro montaje a observar, nos permite observar el parénquima muy definido y esponjoso con, con esferas muy relucientes de color morado intenso, en la observación de 10x observamos los amiloplastos que en su contenido tienen gránulos de almidón que almacenan amilopectinas para la polinización de la glucosa su forma es ovalada y su color morado, esta característica es debido a la tinción con Lugol.

Discusión: De acuerdo con los resultados obtenidos cabe resaltar que al observar en 4x Un grano de almidón está formado por un centro de formación o hilo alrededor del cual se depositan capas de almidón. Estos granos de almidón pueden presentar diferentes formas y tamaños. Por ejemplo, en la papa silvestre o papín (Solanum spp.) son pequeños y alargados. Según Metcalfe, C.R. & L. Chalk. (1979). Al compararlo nuestros resultados con resultados ya citados se identificó que el almidón se presenta en color azul violeta claro eso debe a la presencia de Lugol. según Simes, L. E., & Brich, T. (2015). En este aumento se puede determinar más claramente dichas divisiones considerándolas ya como una célula independiente cada una de la otra, logrando apreciar el núcleo, el citoplasma, la membrana nuclear y la pared celular. Se ven amiloplastos que en su contenido tienen gránulos de almidón que almacenan amilopectinas para la polimerización de la glucosa. Según Ricardo Paniagua. (2007) . Para la observación de 10x se logra identificar claramente cada una de las partes celulares con mayor precisión. El Lugol es una es una solución de yodo diatómico. Se emplea para la tinción. Este reactivo reacciona con algunos polisacáridos, como los almidones, glucógeno y ciertas dextrinas, formando un complejo de inclusión termolábil que se caracteriza por ser colorido, dando color diferente según las ramificaciones que presente la molécula. las propiedades físicas de esta molécula, indicándonos una coloración azul negro, lo anterior es un buen indicador de que los resultados obtenidos fueron acertados, en el caso de la denotación de la pared celular esta no se puedo haber dado debido al colorante, sino a que es una característica común de las células vegetales. Según (Coralía et.al.2014). Al comparar nuestros resultados con lo ya citados de los autores, se puede concluir que el Lugol cumple con una función que es ayudar a demarcar la estructura de la célula, que sin la ayuda de este reactivo no puede ser tan visible sin el uso de los mismo. Se tuvo en cuenta que al Lugol se le bajo la concentración con agua destilada, debido que el Lugol puro puede ser implementado para otro tipo de experimento.

Referencias: Coralía Aguiar, T., Carrillo, F., & Díaz, S. (2014, 24 abril). Prueba de almidón [Publicación en un blog]. Recuperado de Bonifaz, T. J. A., Vázquez, G. D., & Araiza, J. (2012). Micología médica básica (4a. ed.). Retrieved from https://ebookcentral.proquest.com Simes, L. E., & Brich, T. (2015). Bioquímica orientada al análisis químico. Retrieved from https://ebookcentral.proquest.com

Carvajal-Sandoval, Alicia. Manual de histología vegetal, Instituto Politécnico Nacional, 2010. ProQuest Ebook Central, Whistler, R.; BeMiller, J. y Paschall, E. (1984). Starch: chemistry and technology.Academic Press, Inc. Metcalfe, C.R. & L. Chalk. 1979. Anatomy of Dicotyledons. Vol. 1. Clarendon Press Oxford. Ricardo Paniagua. Citologia y Histologia Vegetal y Animal. 4º Edición. Volumen II. España. 2007. Recuperadode:http://www.academia.edu/15273391/Citologia_e_histologia_vegetal_y_a nimal_Vol_II_Paniagua